本研究通過組織培養，對葉下珠進行芽的誘導、增殖、生根和煉苗移栽等，建立了一套完整的葉下珠組培快繁體系，為葉下珠大規模繁殖提供技術參考。

葉下珠組培方法

1、培養條件

基本培養基為 MS，瓊脂 7.5 g·L-1，蔗糖為 30 g·L-1，pH 5.8～6.0。培養溫度(25 ± 1) ℃，光照時間12 h·d -1，光照強度1000～1500 lx。

2、外植體接種

選取長勢均勻的葉下珠植株，用剪刀剪取位于植株中部的莖段，去除葉片與假葉柄。加1～2滴洗潔精將莖段表面洗刷干凈，流水沖洗5～6 h。于超凈工作臺上用75%酒精浸泡30 s，然后用0.1%升汞消毒13 min，無菌水沖洗5～6次，并用無菌濾紙擦干，置于接種盤上。用手術刀將外植體切成1.5～2 cm帶節莖段，生物學頂端朝上接種于培養基上。

3、生長調節劑配比試驗

將消毒外植體接種到按單因素多水平設計的不同生長調節劑配比的、添加0.5 g·L-1活性炭的MS培養基中，共計7組，分別為：IBA為0.2 mg·L-1，6-BA分別為1.0、1.5、2.0、3.0 mg·L-1;6-BA 為 1.5 mg·L-1，IBA 分別為 0.1、0.2、0.5、1.0 mg·L-1 。每組 15 瓶，每瓶接 1個外植體，每3 d觀察1次，15 d統計誘導情況。

4、誘導培養基 得出芽誘導佳生長調節劑配方后，對比添加0.5 g·L-1活性炭的MS和1/2MS培養基的誘導效果，共2組，每組24瓶，每瓶接1個外植體，每4 d觀察1次，20 d后統計誘導情況。

5、不同濃度6-BA對葉下珠芽的處理

將莖段誘導出的芽在超凈工作臺上切成1.5～2 cm帶芽莖段，接種至添加不同濃度6-BA的培養基中，共計3組，每處理5瓶，每瓶2個，即每處理10個外植體，每5 d觀察1次，25 d后統計芽增殖情況。

6、不同濃度NAA與IBA對叢生芽的處理

將增殖擴繁的叢生芽在超凈工作臺上分成單個芽，接種至添加蔗糖20 g·L-1的不同培養基中，共計6組，每處理5瓶，每瓶10個芽，即每處理50個芽，每5 d觀察1次，25 d后統計生根、長勢情況。

7、煉苗

將生根的瓶苗轉移至培養室外進行煉苗，處理時間設置見表5。煉苗后清水洗凈根部培養基，移栽至加水拌成泥狀的菜園土基質。栽培條件：自然光，氣溫25～30 ℃。移栽15 d后統計成活率。

葉下珠的主要藥理活性成分柯里拉京是一種多酚類物質，極容易氧化。在外植體誘導叢生芽的過程中，莖節的切口會分泌大量次生代謝產物，導致外植體褐化，降低組培成功率。外植體褐化程度高，需通過多次轉接以避免褐化，但是多次轉接易造成污染。本試驗通過添加活性炭以吸收次生代謝物，抑制褐化效果良好，也減少人為操作帶來的污染。

在芽增殖試驗中，1.0 mg·L-1 6-BA 和0.2 mg·L-1 IBA的生長調節劑組合是較適合芽增殖的生長調節劑配比，但他們認為芽增殖中6-BA佳濃度為2.0 mg·L-1。本研究中6-BA濃度為1.0、1.5、2.0 mg·L-1的芽增殖系數均達3倍以上，并以1.0 mg·L-1時增殖倍數大，小芽長勢好。

在煉苗移栽研究中，基質為泥狀菜園土。泥狀土在栽培初期水分飽滿，但后期易結塊，對組培苗成活率造成一定影響。可適當添加一定比例的有機土進行改良，調整土壤疏松度，以利于移栽苗成活。